讓我們一起來看看透析袋的選擇和使用方法
透析技術自Thomas Graham 于1861年發明到現在已有一百多年的歷史，它已成為生物化學實驗室簡便，常用的分離純化技術之一。在生物大分子的制備過程中，去除鹽、少量有機溶劑、小分子雜質、樣品濃縮和改變微量樣品的緩沖系統等都要用到透析技術。
生物樣品的透析只需使用專用的半透膜即可完成。通常是將半透膜制成袋狀，將生物大分子樣品溶液置入袋內，浸入水或緩沖液中，樣品溶液中的大分子量的生物大分子被截留在袋內，而鹽和小分子等物質不斷擴散透析到袋外，直到袋內、外兩邊的濃度達到平衡。保留在透析袋內未透析出的樣品溶液稱為“保留液”，袋（膜）外的溶液稱為“滲出液”或“透析液”。
透析的動力是擴散壓，擴散壓是由橫跨膜兩邊的溶質濃度梯度形成的。透析的速度同欲透析的小分子溶質在膜內外兩邊的濃度梯度、膜的面積和溫度成正比，與膜的厚度成反比。升高溫度可加快透析速度。為大限度地保持生物大分子的活性，通常采用4℃透析。
透析膜可用動物膜和玻璃紙等，但用的多的還是用纖維素制成的透析膜。
商品化的透析袋可制成管狀，其扁平寬度為6～50 mm不等。為防干裂，出廠前一般都經10％的甘油處理，透析袋中含有微量的硫化物、重金屬和一些具有紫外吸收的雜質，它們對蛋白質和其它生物活性物質有害，用前必須除去。新購進的透析袋必須經過處理才能使用。50％的乙醇煮沸1小時，再依次用50％乙醇、0.01 mol/L碳酸氫鈉和0.001 mol/L EDTA溶液洗滌，再用蒸餾水沖洗后即可使用。實驗證明，50％乙醇處理對除去具有紫外吸收的雜質特別有效。使用后的透析袋洗凈后可存于蒸餾水中，置4℃保存。若長時間不用，可加入適量的疊氮鈉（NaN2），以抑制微生物的生長。干的透析袋彎折時易出現裂口，用時必須仔細檢查。
經過處理的透析袋，使用時，一端用橡皮筋或線繩扎緊，也可以使用特制的透析袋夾夾緊，由另一端灌滿蒸餾水，用手指稍加壓，檢查是否漏液，確證無誤后，再用蒸餾水洗凈，方可裝入待透析樣品。裝入樣品時通常要留三分之一至一半的空間，以防透析過程中，因透析樣品中的小分子濃度較大，袋外的水和緩沖液過量進入袋內將袋漲破。含鹽量很高的蛋白質溶液透析經過一夜時，體積增加是正常的，有時甚至可達50％以上。透析可以使用燒杯、量筒和塑料桶等容器，容器的大小以20-50:1為宜。少量樣品溶液的透析，可在袋內放一截兩頭燒園的玻璃棒或兩端封口的玻璃管，以使透析袋沉入液面以下。
通常為了把握透析效果，有時需要對透析液中欲去除的小分子殘留物進行分析，如甘氨酸、二甲基甲酰胺、甲醛、戊二醛、碳酸根、偶聯劑等。小分子殘留物的檢測分析方法很多，如 (NH4)2SO4可用1％的BaCl2檢查，NaCl、KCl等可用1％的AgNO3 檢查。有些檢測方法比較復雜，或需要一定的條件，如確有必要可參考相關文獻資料。
為了加快透析速度，提高透析效率，除及時更換透析液外，還可使用磁力攪拌，還可以使用各種透析裝置。
